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遠(yuǎn)慕生物多肽純化十問十答!
點擊次數(shù):293 更新時間:2022-05-26

1. 多肽含量與多肽純度有什么區(qū)別?
一條多肽產(chǎn)品中除了多肽本身還包括生產(chǎn)過程中帶入的水份及有機鹽分等雜質(zhì),多肽純度僅指多肽本身所含肽產(chǎn)品的含量及雜質(zhì)的含量,不包括水份等雜質(zhì);而多肽含量則是指目標(biāo)多肽在產(chǎn)品中的凈含量,一般以N元素分析或氨基酸分子的方法來檢測;因此一條多肽即使純度達(dá)到99%,因為產(chǎn)品中還包含水份及有機鹽分等,它的含量可能也只有70-80%。
 
2 如何溶解多肽?多肽樣品在上制備柱前為什么需要進行前處理?有哪些前處理的方法?
多數(shù)多肽都可以用超純水溶解,對于一些難溶的多肽,先要分析其氨基酸序列,對于酸性多肽,可先以小量堿性(如0.1%氨/水)溶液溶解,然后稀釋至所需濃度,對于堿性多肽,可先以小量酸性(如醋酸,三氟/乙酸)溶液溶解,然后稀釋至所需濃度,對于疏水性多肽,可用強極性有機溶劑溶解,如DMF,甲醇,丙醇,異丙醇,DMSO等。制備色譜柱子由于處理的樣品多,比分析柱子更容易受污染,因此有必要對樣品進行前處理以有效延長制備柱的壽命。主要方法有5種:萃取、過濾、離心、上預(yù)柱、加在線過濾器。
 
3. 為什么流動相中要加入三氟/乙酸作為離子對試劑,還有哪些流動相體系或離子對試劑可用于多肽的分離純化?
目前常用的流動相體系是水加yi腈,以三氟/乙酸(TFA)為離子對試劑,根據(jù)不同多肽以合適的梯度洗脫分離多肽。加入三氟/乙酸能調(diào)節(jié)洗脫液的PH,同時作為離子對試劑與多肽相互作用,從而增強分離效果,明顯改善峰形。其它可用于多肽分離純化的流動相體系或離子對試劑包括醋酸體系,磷酸體系,鹽酸體系,七氟丁/酸等通過適當(dāng)?shù)恼{(diào)節(jié)PH都能取得很好的分離效果。
 
4. 如何選擇純化過程中使用的色譜柱填料?
不同序列的多肽理化性質(zhì)及疏水性有很大的區(qū)別,多數(shù)情況分子量小于4000和親水性多肽用C18柱分離效果最/佳,分子量大于5000和極/端疏水性的多肽以C4柱分離效果/最/佳,而C8柱介于C18和C4柱之間,其應(yīng)用效果與C18柱更相似;對一些特殊選擇性的多肽,也可選擇苯基柱和聚合物色譜柱。
 
5. 在純化過程中選擇聚合物填料的原則是什么?
需要使用高于正常pH或溫度條件進行純化時,可以使用pH范圍極寬的聚合物色譜柱,它的優(yōu)點就是在極/端pH條件下不會降解,可以使用強酸和強堿作為流動相進行分離純化。
 
6. 影響多肽純度檢測結(jié)果的因素
影響多肽純度檢測結(jié)果的因素很多,主要包括:流動相體系、色譜柱型號、柱溫、波長及色譜儀的性能指標(biāo),每一項不同都可能造成結(jié)果產(chǎn)生誤差。
 
7. 在多肽檢測過程中經(jīng)常出現(xiàn)基線漂移的原因是什么?怎么解決?
固定三氟/乙酸濃度的梯度洗脫有時會在210-220nm檢測處造成吸收基線的漂移,這是許多反相分離中基線漂移的原因。降低或消除由于三氟/乙酸光譜吸收變化引起的基線漂移需要盡量使檢測波長靠近215nm,并在溶劑B中比在溶劑A中少加15%的三氟/乙酸補償基線漂移。例如溶劑A中的三氟/乙酸為0.1%時,溶劑B中可用0.085%。
 
8. 反相色譜分離純化后,怎樣去除產(chǎn)品中流動相產(chǎn)品中的TFA,yi腈等雜質(zhì)?
凍干的辦法應(yīng)該可以除去大多數(shù)TFA和yi腈,只要不超過允許范圍,這種辦法是最/簡單、有效的。對TFA含量要求更高的一些藥物肽凍干的方法一般無法完/全達(dá)到要求,需要進行專門的轉(zhuǎn)鹽或脫鹽。
 
9. 多肽一般有哪幾種鹽的形式?通過什么方式轉(zhuǎn)鹽或脫鹽?
多數(shù)多肽都是在TFA體系下分離純化的,所以多肽以TFA鹽的形式最多,其次藥物肽一般有醋酸鹽及鹽酸鹽的形式,極少數(shù)藥物肽會有一些特殊的鹽形式。轉(zhuǎn)鹽方式多為離子交換法和HPLC法,而脫鹽可用透析袋和超濾膜。
 
10. TFA在緩沖液中是不是只起到調(diào)節(jié)PH的作用?TFA的濃度越高基線漂移越厲害,那是不是說TFA的濃度在緩沖液PH允許的情況下越低越好?
(1)TFA起到類似離子對的作用,一般濃度在0.05-0.1%,過高的濃度,會使溶液偏酸,長時間使用可能影響柱子壽命。
(2)同時TFA可以抑制硅膠表面硅醇基,改善堿性化合物的峰型。有時0.1%TFA分離不好的話??梢钥紤]加大濃度到0.2%。但要注意用完后及時沖洗色譜柱。
(3)走梯度時,因為走成基線漂移,但對制備的影響不大。

 

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