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遠(yuǎn)慕簡(jiǎn)述昆蟲細(xì)胞系統(tǒng)的蛋白表達(dá)與純化
點(diǎn)擊次數(shù):529 更新時(shí)間:2023-06-25

昆蟲表達(dá)體系是四大蛋白表達(dá)系統(tǒng)(原核細(xì)胞,酵母,昆蟲細(xì)胞,真核哺乳動(dòng)物表達(dá)體系)之一。昆蟲表達(dá)系統(tǒng)的原理是通過將轉(zhuǎn)移載體中的表達(dá)組件轉(zhuǎn)座到大腸桿菌中增殖的桿狀病毒穿梭載體上,提取穿梭質(zhì)粒DNA轉(zhuǎn)染昆蟲細(xì)胞后,得到的子代病毒即為重組病毒。將病毒上清侵染昆蟲細(xì)胞,獲得表達(dá)的重組蛋白。

昆蟲表達(dá)體系有很多優(yōu)點(diǎn):
1、具有糖基化,乙?;姿峄饔玫鹊鞍追g加工修飾;
2、易于操作。桿狀病毒基因組較小,分子生物學(xué)特性簡(jiǎn)單;
3、昆蟲細(xì)胞懸浮生長(zhǎng),容易放大培養(yǎng);
4、可表達(dá)較大的外源性基因而不影響本身增殖;
5、可以高效表達(dá)外源基因。

一、常見的蛋白表達(dá)系統(tǒng)
為了表達(dá)和純化目的蛋白,常見的蛋白表達(dá)體系包括大腸桿菌、酵母、昆蟲細(xì)胞、哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)和體外翻譯體系等,其中實(shí)驗(yàn)室中比較常用的是大腸桿菌、昆蟲細(xì)胞和哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)細(xì)胞。大腸桿菌可以表達(dá)一些對(duì)于翻譯后修飾沒有什么要求的蛋白,操作最jian單便捷,適合低成本大量表達(dá)目的蛋白;昆蟲細(xì)胞可以表達(dá)一些需要簡(jiǎn)單的糖基化修飾等的蛋白,操作比大腸桿菌復(fù)雜但比哺乳動(dòng)物細(xì)胞要簡(jiǎn)單一些,目的蛋白的表達(dá)純化的成本高于大腸桿菌但低于哺乳動(dòng)物細(xì)胞;哺乳動(dòng)物細(xì)胞適合表達(dá)需要復(fù)雜翻譯后修飾的蛋白,目的蛋白的表達(dá)純化的成本相對(duì)較高。體外翻譯系統(tǒng)大多用于蛋白翻譯的研究,僅在特殊情況下才會(huì)用于目的蛋白的表達(dá)和純化;酵母用于目的蛋白的表達(dá)和純化相對(duì)比較常見一些,其中獲得的蛋白的修飾程度和成本介于大腸桿菌和昆蟲表達(dá)系統(tǒng)之間。昆蟲或者哺乳動(dòng)物表達(dá)系統(tǒng),相當(dāng)于把生物體作為了反應(yīng)器,用于表達(dá)和純化所需的目的蛋白。
產(chǎn)品中包含了大腸桿菌蛋白表達(dá)純化系統(tǒng)、昆蟲細(xì)胞蛋白表達(dá)純化系統(tǒng)和哺乳動(dòng)物蛋白表達(dá)純化系統(tǒng)。

提供的大腸桿菌蛋白表達(dá)純化系統(tǒng)主要采用pET系列質(zhì)粒,轉(zhuǎn)化到BL21系列等菌株中,進(jìn)行目的蛋白的表達(dá),后續(xù)使用鎳柱或GST柱進(jìn)行目的蛋白的純化。該系統(tǒng)不僅適合小量目的蛋白的表達(dá)純化,也適合較大量的目的蛋白的表達(dá)純化。

昆蟲蛋白表達(dá)純化系統(tǒng),可以采用Bac-to-Bac桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng), 通過LipoInsect?轉(zhuǎn)染試劑感染Sf9等昆蟲細(xì)胞,最終通過鎳柱、GST柱等方法進(jìn)行目的蛋白的表達(dá)和純化。Bac-to-Bac桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)是由Luckow等人于1993年發(fā)展的一種快速有效產(chǎn)生重組桿狀病毒的方法,也是到目前為止使用最為廣泛的昆蟲表達(dá)系統(tǒng)。

哺乳細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)包括小量目的蛋白的表達(dá)純化和大量目的蛋白的表達(dá)純化兩種。進(jìn)行小量目的蛋白的表達(dá)純化時(shí),通??梢圆捎胮CMV等系列真核表達(dá)載體,使用脂質(zhì)體或磷酸鈣等轉(zhuǎn)染試劑轉(zhuǎn)染細(xì)胞后,進(jìn)行目的蛋白的表達(dá),隨后可以采用目的蛋白抗體或所帶的標(biāo)簽抗體進(jìn)行免疫沉淀,也可以考慮采用鎳柱或GST柱進(jìn)行目的蛋白的純化;進(jìn)行大量目的蛋白的表達(dá)純化時(shí),可采用Lipo293F?轉(zhuǎn)染試劑大量轉(zhuǎn)染293f細(xì)胞,從而實(shí)現(xiàn)大規(guī)模的蛋白表達(dá)與后續(xù)的純化。

二、昆蟲蛋白表達(dá)和純化系統(tǒng)

昆蟲桿狀病毒表達(dá)載體系統(tǒng)(Baculovirus Expression Vector Systems, BEVS)是一個(gè)二元系統(tǒng)。第一個(gè)部分是病毒感染的昆蟲宿主,通常是鱗翅目昆蟲細(xì)胞系,有時(shí)也可以是鱗翅目的昆蟲。第二個(gè)部分是桿狀病毒表達(dá)載體,其功能是將編碼目標(biāo)蛋白的外源基因?qū)胨拗骷?xì)胞中、組裝桿狀病毒并進(jìn)行目的蛋白的表達(dá)。

1.昆蟲細(xì)胞
鱗翅目昆蟲(Order Lepidoptera)包括蛾(moth)和蝴蝶(butterfly),它們是桿狀病毒家族中多種病毒的宿主。目前已經(jīng)建立了超過250種的昆蟲細(xì)胞株。桿狀病毒表達(dá)載體涉及的最chang用的鱗翅類昆蟲細(xì)胞株有兩個(gè),其中一個(gè)是Sf9, 由Smith和 Summers在1987年亞克隆IPLB-SF-21而建立的。IPLB-SF-21細(xì)胞系是在1977年從草地貪夜蛾(又稱為秋天行軍蟲)蛹的卵巢組織中分離出來的;另外一個(gè)是HighFive, 最初是從粉紋夜蛾(又稱為甘藍(lán)銀紋夜蛾)(cabbageIooper)的成熟卵巢組織中分離到的細(xì)胞株。

Sf9/Sf21和HighFive兩種細(xì)胞系都能以貼壁或懸浮狀態(tài)生長(zhǎng)。通過感染在培養(yǎng)板或培養(yǎng)瓶中生長(zhǎng)的 Sf9/Sf21或 HighFive細(xì)胞,可以很方便地實(shí)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)室規(guī)模的蛋白質(zhì)生產(chǎn)的目的。昆蟲細(xì)胞培養(yǎng)的條件和方法與哺乳動(dòng)物細(xì)胞的培養(yǎng)方法不太一樣,昆蟲細(xì)胞的培養(yǎng)溫度是25-30℃,最適溫度是28℃而不是37℃;另外,Sf9/ Sf21和HighFive細(xì)胞貼壁不緊, 在傳代培養(yǎng)時(shí)不需要EDTA或yi酶(trypsin)處理;昆蟲細(xì)胞的生長(zhǎng)也不需要CO2培養(yǎng)箱,因?yàn)槔ハx細(xì)胞培養(yǎng)液通常是用磷酸鹽而不是碳酸鹽作為緩沖液。Sf9/Sf21和HighFive細(xì)胞都可以在有或沒有血清的培養(yǎng)液中生長(zhǎng)。多種不同的昆蟲細(xì)胞培養(yǎng)液都能夠從多個(gè)不同的制造商買到,其中包括Express*tems、Invitrogen(GIB-CO)、HyClone和Sigma-Aldrich。有血清培養(yǎng)液主要有Grace's insect cell culture medium,TNM-FH,IPL-41,TC-100和Schneider's insect medium等,而無血清培養(yǎng)液主要有SF-900II SFM,SF-900III SFM和Express-Five SFM等特別適合蛋白的大規(guī)模表達(dá)。需要指出的是,Sf9/Sf21和HighFive細(xì)胞都會(huì)傾向于逐漸適應(yīng)某種特定的培養(yǎng)液,如果突然將它們的培養(yǎng)液從有血清培養(yǎng)液變?yōu)闊o血清培養(yǎng)液時(shí)往往會(huì)導(dǎo)致培養(yǎng)細(xì)胞的損失。因此通常建議采用"緩慢培養(yǎng)液更換法",如在連續(xù)傳代中,應(yīng)該將無血清培養(yǎng)液的比例從0% 依次升高至25%、50%、75%,直至100%。即使使用這種相對(duì)緩慢的血清戒除法,當(dāng)將細(xì)胞剛剛置于不含血清的培養(yǎng)液時(shí),這些細(xì)胞也會(huì)經(jīng)歷短暫的生長(zhǎng)停止或生長(zhǎng)緩慢,但這些細(xì)胞會(huì)在新培養(yǎng)液中緩慢生長(zhǎng)12天后恢復(fù)至正常的生長(zhǎng)速率。"緩慢培養(yǎng)液更換法"不僅可實(shí)現(xiàn)從有血清培養(yǎng)液到無血清培養(yǎng)液的轉(zhuǎn)換,還可以用于將昆蟲細(xì)胞從一種無血清培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移到另一種無血清培養(yǎng)液。
昆蟲細(xì)胞可作為桿狀病毒感宿主而進(jìn)行高水平的外源蛋白的表達(dá),來自昆蟲桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)的重組蛋白通常具有正確的翻譯后修飾和生物學(xué)活性,其翻譯后蛋白修飾狀態(tài)與哺乳動(dòng)物類似,當(dāng)然這種加工與哺乳動(dòng)物細(xì)胞對(duì)蛋白質(zhì)的加工并不總是相同,比較明顯的一個(gè)例子就是蛋白的N-糖基化修飾有所不同。Invitrogen將一個(gè)最初命名為SfSWT-I的源于Sf9細(xì)胞的轉(zhuǎn)基因昆蟲細(xì)胞系命名為Mimic Sf9, 該細(xì)胞系具有更完整的N-糖基化途徑,在含有血清的培養(yǎng)液中能夠表達(dá)出人源化的重組糖蛋白。

2. 昆蟲桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)
與大腸桿菌、酵母和哺乳動(dòng)物細(xì)胞等其它常用的重組蛋白表達(dá)系統(tǒng)相比,昆蟲桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)具有以下du特的優(yōu)點(diǎn):
(1) 與大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)相比,對(duì)于某些容易在大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)中由于二硫鍵錯(cuò)誤配對(duì)或者缺乏蛋白翻譯后修飾(如磷酸化和糖基化等)而形成包涵體的蛋白,在大多數(shù)情況下,在昆蟲表達(dá)系統(tǒng)中高水平表達(dá)的重組蛋白往往可溶,而且能折疊正確,并且含有對(duì)某些蛋白活力所必須的翻譯后修飾(如磷酸化和糖基化等)。
(2) 與酵母和哺乳動(dòng)物表達(dá)系統(tǒng)等其它真核表達(dá)系統(tǒng)相比,外源基因表達(dá)水平高,非常適應(yīng)大規(guī)模表達(dá)所需的高密度懸浮培養(yǎng),而且比較容易分離純化。
(3) 昆蟲細(xì)胞由于懸浮生長(zhǎng),容易進(jìn)行放大培養(yǎng),從而可進(jìn)行大規(guī)模的重組蛋白表達(dá)純化,昆蟲桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)廣泛應(yīng)用于科研和工業(yè)生產(chǎn)領(lǐng)域,重組蛋白產(chǎn)量最高可達(dá)1g/L。
(4) 昆蟲細(xì)胞可用于同時(shí)表達(dá)多種重組蛋白,可通過多種重組病毒同時(shí)感染昆蟲細(xì)胞或用含有多個(gè)表達(dá)框的一種病毒感染昆蟲細(xì)胞來實(shí)現(xiàn)。所以該系統(tǒng)特別適合表達(dá)多亞基的蛋白復(fù)合物以進(jìn)行蛋白的結(jié)構(gòu)功能研究等。
(5) 生物安全性高。昆蟲桿狀病毒具有嚴(yán)格的宿主范圍,通常僅限于非脊椎動(dòng)物,因此具有生物安全性高這一特點(diǎn)。

3. Bac-to-Bac桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)
Bac-to-Bac桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)是由Luckow等人于1993年發(fā)展的一種快速有效產(chǎn)生重組桿狀病毒的方法,也是到目前為止使用最為廣泛的昆蟲桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)。該系統(tǒng)主要包括以下兩個(gè)組分:(1) 用于插入目的基因的pFastBac載體,在該系列載體中,目的基因的高水平表達(dá)由Autographa californica多核多角體病毒(multiple nuclear polyhedrosis virus, AcMNPV)的多角體啟動(dòng)子(polyhedrin(PH)promoter)驅(qū)動(dòng)。載體多克隆位點(diǎn)的兩側(cè)均為Tn7元件,同時(shí)還含有一個(gè)慶大mei素抗性基因(gentamicin resistance gene)和形成mini Tn7所需的SV40 polyA signal。(2)含桿狀病毒穿梭載體bacmid (bMON14272, 136kb)和輔助質(zhì)粒(helper plasmid,用于表達(dá)轉(zhuǎn)座必須的轉(zhuǎn)座蛋白) pMON7124的大腸桿菌DH10Bac宿主菌株。Bac-to-Bac昆蟲桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)利用遺傳轉(zhuǎn)座(genetic transposition)得到重組病毒。DH10Bac宿主包含的bacmid bMON14272含小型F復(fù)制子,卡那mei素抗性基因,mini-attTn7位點(diǎn)和lacZα互補(bǔ)因子(可通過藍(lán)白斑篩選);輔助質(zhì)粒pMON7124包含四環(huán)素抗性和tnsABCD區(qū)域,該區(qū)域表達(dá)轉(zhuǎn)座反應(yīng)所需的轉(zhuǎn)座蛋白。當(dāng)pFastBac重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化進(jìn)入DH10Bac細(xì)胞后,pFastBac載體上的mini-Tn7位點(diǎn)和DH10Bac宿主菌中bacmid上的mini-attTn7位點(diǎn)之間發(fā)生轉(zhuǎn)座(transposition),產(chǎn)生重組bacmid。該轉(zhuǎn)座會(huì)導(dǎo)致bacmid上的LacZ基因的破壞,因此可以通過在細(xì)菌培養(yǎng)平板上進(jìn)行藍(lán)白斑篩選來鑒別含有重組bacmid的DH10Bac菌落,從白色菌落的DH10Bac克隆中可分離出含有編碼目的基因的重組bacmid DNA,后者進(jìn)一步感染昆蟲細(xì)胞后可產(chǎn)生含有重組子的桿狀病毒即可啟動(dòng)外源重組蛋白的表達(dá)。表達(dá)目的蛋白的桿狀病毒在被擴(kuò)增和滴度測(cè)定后,高滴度的桿狀病毒即可用于感染昆蟲細(xì)胞以進(jìn)行大規(guī)模的目的蛋白的表達(dá)。

4. Bac-to-Bac桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)進(jìn)行目的蛋白表達(dá)的實(shí)驗(yàn)步驟
(1)把目的基因克隆至pFastBac系列載體產(chǎn)生重組質(zhì)粒。根據(jù)pFastBac系列載體的多克隆位點(diǎn)選做合適的酶切位點(diǎn),按照讀碼框插入待表達(dá)的目的基因序列。最后通過測(cè)序驗(yàn)證插入序列是否正確。

(2)轉(zhuǎn)化pFastBac重組質(zhì)粒到DH10Bac大腸桿菌中,37℃培養(yǎng)48小時(shí)??梢赃x擇pFastBac1-EGFP (D2802)作為對(duì)照質(zhì)粒,可以選購(gòu)DH10Bac甘油菌(D0346)用于制備感受態(tài)細(xì)胞。轉(zhuǎn)化后利用藍(lán)白斑篩選重組菌株。重組菌株由于轉(zhuǎn)座會(huì)導(dǎo)致LacZ基因的破壞而呈現(xiàn)白斑,用于藍(lán)白斑篩選的LB瓊脂糖平板應(yīng)含有50μg/ml卡那mei素,7μg/ml慶大mei素,10μg/ml四環(huán)素,40μg/ml X-gal和40μg/ml IPTG。

(3)選做:挑取白斑,重新劃線以確認(rèn)獲得的白色克隆是真實(shí)的白斑。平板含有50μg/ml卡那mei素,7μg/ml慶大mei素,10μg/ml四環(huán)素,40μg/ml X-gal和40μg/ml IPTG,37℃培養(yǎng)過夜。

(4)挑取白斑,培養(yǎng)過夜。須使用含有50μg/ml卡那mei素,7μg/ml慶大mei素和10μg/ml四環(huán)素的LB培養(yǎng)液。

(5)小量抽提試劑盒提取重組bacmid DNA。推薦使用桿狀病毒穿梭載體bacmid小量提取試劑盒(D0031)提取重組bacmid DNA。重組Bacmid DNA應(yīng)該分裝凍存于-20℃,因?yàn)榉磸?fù)凍融會(huì)導(dǎo)致bacmid斷裂等從而顯著降低其轉(zhuǎn)化效率。如兩星期內(nèi)使用,可保存于4℃。

(6) 重組bacmid的PCR鑒定。利用 PCR反應(yīng)對(duì)陽性克隆進(jìn)行進(jìn)一步的驗(yàn)證。PCR 反應(yīng)所用引物為pUC/M13 forward primer (5'-CCCAGTCACGACGTTGTAAAACG-3'),和pUC/M13 reverse primer (5'-AGCGGATAACAATTTCACACAGG-3')。沒有發(fā)生轉(zhuǎn)座的bacmid其所擴(kuò)增所產(chǎn)生的片段長(zhǎng)度為350bp,重組bacmid擴(kuò)增所產(chǎn)生的片段的長(zhǎng)度為350bp加上插入片段的長(zhǎng)度。

(7)重組bacmid轉(zhuǎn)染昆蟲細(xì)胞。推薦使用生產(chǎn)的昆蟲轉(zhuǎn)染試劑LipoInsect? (C0551),將提取的重組Bacmid轉(zhuǎn)染進(jìn)入昆蟲細(xì)胞。建議使用Grace's Insect Cell Culture Medium培養(yǎng)液進(jìn)行轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染時(shí)如果使用的昆蟲轉(zhuǎn)染試劑LipoInsect?,實(shí)驗(yàn)步驟請(qǐng)嚴(yán)格按照其說明書進(jìn)行。轉(zhuǎn)染后,28℃培養(yǎng)24小時(shí),細(xì)胞和細(xì)胞核開始變大;轉(zhuǎn)染后24-72小時(shí),細(xì)胞慢慢停止生長(zhǎng)、脫落,細(xì)胞表面長(zhǎng)出芽孢狀結(jié)構(gòu);轉(zhuǎn)染后72小時(shí)候細(xì)胞開始裂解,此時(shí)病毒開始釋放到培養(yǎng)液中。如果同時(shí)轉(zhuǎn)染了pFastBac1-EGFP (D2802),在轉(zhuǎn)染72小時(shí)后可以觀察到大部分細(xì)胞呈現(xiàn)綠色熒光,轉(zhuǎn)染后96小時(shí)幾乎所有的細(xì)胞都呈現(xiàn)綠色熒光,這樣可以作為整個(gè)病毒包裝體系的陽性對(duì)照。

(8)收集P1代桿狀病毒。轉(zhuǎn)染96小時(shí)后,收集培養(yǎng)液上清,500g離心5分鐘以沉淀細(xì)胞和細(xì)胞碎片,取上清即為P1代桿狀病毒。此時(shí)病毒滴度通常為1X106-1X107pfu/ml。P1代病毒可短期保存于4℃,或分裝于含2% FBS的培養(yǎng)液中后在-80℃較長(zhǎng)期保存。反復(fù)凍融會(huì)大大降低病毒活力,其滴度有可能降低10至100倍。

(9)P1代桿狀病毒的擴(kuò)增。P1代病毒再次感染昆蟲細(xì)胞可獲得P2代病毒。如果采用懸浮培養(yǎng)的昆蟲細(xì)胞進(jìn)行病毒擴(kuò)增,建議使用10ml培養(yǎng)液并且控制細(xì)胞密度為2X106/ml;如果使用6孔板貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞進(jìn)行擴(kuò)增,細(xì)胞密度應(yīng)為2X106/well,MOI (multiplicity of infection)為0.05-0.1(即每100個(gè)細(xì)胞用5-10pfu的病毒進(jìn)行感染)。28℃培養(yǎng)48-72小時(shí)后,70-80%的細(xì)胞死亡時(shí),收集細(xì)胞和上清,500g離心5分鐘,取上清即為P2代病毒。此時(shí)病毒滴度約為1X107-1X108pfu/ml??墒占静襟E離心后的細(xì)胞碎片沉淀,加入適量的1X SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液(P0015A),裂解后進(jìn)行SDS-PAGE凝膠電泳及Western blot檢測(cè),以分析確定目的蛋白是否已經(jīng)正常表達(dá)。
(10)選做:P2代桿狀病毒的擴(kuò)增。如果P2代病毒滴度仍然偏低,可對(duì)P2代病毒再次進(jìn)行擴(kuò)增,擴(kuò)增方法同P2代病毒的擴(kuò)增方法。P2代病毒感染昆蟲細(xì)胞后最終會(huì)獲得滴度更高的P3代病毒。
(11)病毒感染昆蟲細(xì)胞進(jìn)行目的蛋白的大規(guī)模表達(dá)。可選擇Sf9/Sf1/HighFive的任何一種細(xì)胞株進(jìn)行蛋白大規(guī)模表達(dá)。但如果表達(dá)的是分泌蛋白,建議選用HighFive。建議在昆蟲細(xì)胞的對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期進(jìn)行病毒感染,此時(shí)細(xì)胞密度在1X106/ml -2X106/ml為佳,MOI可從5-10開始嘗試。建議在不同的時(shí)間階段,如感染后24、48、72或96小時(shí)收集細(xì)胞,裂解細(xì)胞,SDS-PAGE并進(jìn)行Western Blot檢測(cè)以確定最佳的停止蛋白表達(dá)的時(shí)間。因?yàn)槔ハx細(xì)胞內(nèi)有很多蛋白酶,表達(dá)時(shí)間過長(zhǎng)會(huì)導(dǎo)致目的蛋白的降解。分泌蛋白的表達(dá)高峰通常在感染后30-72小時(shí),而非分泌蛋白的表達(dá)高峰通常在感染后48-96小時(shí)。

5. 目的蛋白的純化
利用pFastBac1進(jìn)行目的蛋白的表達(dá)的時(shí)候,根據(jù)蛋白純化方式的需要以及融合表達(dá)目的蛋白以提高其表達(dá)量的需要,可以在質(zhì)粒構(gòu)建時(shí)添加His標(biāo)簽或GST標(biāo)簽。為了防止額外添加的His和GST等蛋白標(biāo)簽影響目的蛋白的生物學(xué)功能和結(jié)構(gòu)研究,可在融合蛋白和標(biāo)簽之間添加蛋白酶酶切位點(diǎn),如TEV或PreScission的酶切位點(diǎn)。昆蟲表達(dá)蛋白的純化步驟和大腸桿菌表達(dá)蛋白的純化步驟基本一致。如果蛋白主要以可溶形式表達(dá),離心收集昆蟲細(xì)胞,超聲裂解細(xì)胞,但由于昆蟲細(xì)胞內(nèi)蛋白酶種類比較多,需要添加各種蛋白酶抑制劑。離心收集超聲后上清,使用鎳柱或GST柱等純化目的蛋白。推薦使用BeyoGold? His-tag Purification Resin (P2210/P2218/P2220)進(jìn)行His標(biāo)簽蛋白的純化,推薦使用BeyoGold? GST-tag Purification Resin(P2250/P2251/P2253/P2255) 進(jìn)行GST標(biāo)簽蛋白的純化,同時(shí)可以利用離子交換、分子篩層析等進(jìn)一步純化目的蛋白。可以使用PreScission Protease (P2302/P2303)或者TEV Protease (P2307/P2308)進(jìn)行柱上酶切或者洗脫后酶切(如果使用TEV Protease,我們推薦使用洗脫后酶切)以取代蛋白標(biāo)簽。純化獲得的蛋白,可以添加適量甘油后保存,或者如果有需要也可以適當(dāng)濃縮后保存等。


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